<\/p>\n
Microscope Confocal Nikon<\/b><\/p>\n
Compos\u00e9 d\u2019un statif Eclipse TE2000-E, du syst\u00e8me confocal C1, du logiciel EZC1 et de 3 lasers\u00a0: Air-cooled Argon 488 nm (100 mW), He-Ne 543 nm (1.5 mW), He-Ne 633 nm (1.5 mW).<\/p>\n
D\u00e9tection\u00a0: 500-530 nm, 560-610 nm, LP665 nm.<\/p>\n
Egalement \u00e9quip\u00e9 pour imager en Contraste Interf\u00e9rentiel Diff\u00e9rentiel.<\/p>\n
Observation possible en lumi\u00e8re blanche transmise et en \u00e9pifluorescence (DAPI\/GFP\/TxRed).<\/p>\n
2 Stations de vid\u00e9omicroscopie<\/b><\/p>\n
L\u2019une comporte un statif invers\u00e9 Axiovert 35 Zeiss, une lampe Xenon, une roue \u00e0 filtre, une cam\u00e9ra micro max Princeton instruments, le logiciel Metafluor, une platine chauffante, un micromanipulateur et un microinjecteur Eppendorf.<\/p>\n
L\u2019autre est compos\u00e9e d\u2019un statif invers\u00e9 Eclipse TE200 Nikon, d\u2019un \u00e9clairage \u00e0 fibre pr\u00e9centr\u00e9 \u00a0Hg Intensilight Nikon, de 2 roues \u00e0 filtres, d\u2019une cam\u00e9ra EMCCD Hamamatsu et du logiciel Simple PCI Compix.<\/p>\n
Exemples d\u2019application\u00a0: Mesure de variations de Ca (sonde Fura-2), de variations de pH (sonde BCECF),<\/p>\n
2 Postes d\u2019\u00e9pifluorescence<\/b><\/p>\n
Statifs droits Axioskop Zeiss, lampe \u00e0 vapeur de Hg, observation en lumi\u00e8re blanche transmise et en fluorescence DAPI\/ Alexa 488\/Alexa568.<\/p>\n
L\u2019un est \u00e9quip\u00e9 d\u2019une cam\u00e9ra ORCA R2 Hamamatsu et du logiciel HCImage Compix.<\/p>\n
L\u2019autre est \u00e9quip\u00e9 d\u2019une cam\u00e9ra DXM 1200 Nikon et du logiciel Act-1 Nikon.<\/p>\n
<\/p>\n
Plate-forme d’imagerie<\/strong><\/p>\n Cytom\u00e8tre en flux<\/strong><\/p>\n Un nouveau cytom\u00e8tre multicouleur est disponible sur le campus d’Orsay. Il s’agit d’un Partec CyFlow ML avec 3 lasers (405, 488 et 561 nm) et 8 param\u00e8tres optiques. Le choix des lasers est optimis\u00e9 pour l’\u00e9tude des prot\u00e9ines fluorescentes (CFP, GFP, YFP, mCherry\u2026). Les fluorophores classiques de la cytom\u00e9trie en flux sont \u00e9galement utilisables (Hoechst, Alexa 405, FITC, fluo 4, PE, Cy-3, Texas Red, PE-Cy-5\u2026). Le CyFlow est pilot\u00e9 par le logiciel FloMax de Partec. C’est un logiciel d’acquisition permettant les principales op\u00e9rations de cytom\u00e9trie : acquisition en lin, log3 ou log4; compensation; r\u00e9gions d’int\u00e9r\u00eat; seuils; gain variable; affichage multi- param\u00e8tres en 2D et en histogramme. Le CyFlow permet \u00e9galement un comptage absolu de particules. Les donn\u00e9es sont enregistr\u00e9es en format FCS2 ou FCS3 pour exportation si besoin. Le cytom\u00e8tre est accessible aux utilisateurs externes apr\u00e8s formation et avec participation aux frais de fonctionnement et d’entretien.<\/p>\n Microscope confocal Nikon<\/strong><\/p>\n Nikon TE 2000<\/p>\n 2 Stations de vid\u00e9omicroscopie<\/strong><\/p>\n Microscope \u00e0 fluorescence avec monochromateur<\/strong><\/p>\n Un microscope invers\u00e9 (Nikon) avec un monochromateur rapide (Polychrome V) et un cam\u00e9ra CCD tr\u00e8s sensible permet des enregistrement en vid\u00e9o microscopie avec alternation rapide entre plusieurs longueurs d’onde d’excitation (fura-2 par exemple).<\/p>\n Microscope \u00e0 \u00e9pifluorescence (2 postes)<\/strong><\/p>\n Station d’\u00e9lectrophysiologie, patch-clamp<\/strong><\/p>\n Un microscope invers\u00e9 (Nikon) sur table antivibratoire est \u00e9quip\u00e9 avec un micromanipulateur (eppendorf), un amplificateur de patch-clamp (HEKA EPC-9) et pilot\u00e9 par le logiciel HEKA EPC-9.<\/p>\n 2 salles de culture cellulaire L2<\/strong><\/p>\n Lign\u00e9es de cellules h\u00e9patocytaires polaris\u00e9es<\/strong><\/p>\n Lecteur de microplaques<\/strong><\/p>\n Un lecteur de microplaques Perkin Elmer Victor3 est \u00e9quip\u00e9 de d\u00e9tection par absorption, fluorescence et luminescence. Il est \u00e9galement \u00e9quip\u00e9 d’un syst\u00e8me de chauffage (37\u00b0C max).<\/p>\n","protected":false},"excerpt":{"rendered":" Microscope Confocal Nikon Compos\u00e9 d\u2019un statif Eclipse TE2000-E, du syst\u00e8me confocal C1, du logiciel EZC1 et de 3 lasers\u00a0: Air-cooled Argon 488 nm (100 mW), He-Ne 543 nm (1.5 mW), He-Ne 633 nm (1.5 mW). D\u00e9tection\u00a0: 500-530 nm, 560-610 nm, LP665 nm. Egalement \u00e9quip\u00e9 pour imager en Contraste Interf\u00e9rentiel Diff\u00e9rentiel. Observation possible en lumi\u00e8re […]<\/p>\n","protected":false},"author":1,"featured_media":0,"parent":0,"menu_order":6,"comment_status":"open","ping_status":"open","template":"","meta":[],"_links":{"self":[{"href":"https:\/\/scicf-wordpress.web-srv01.dsi.universite-paris-saclay.fr\/index.php?rest_route=\/wp\/v2\/pages\/15"}],"collection":[{"href":"https:\/\/scicf-wordpress.web-srv01.dsi.universite-paris-saclay.fr\/index.php?rest_route=\/wp\/v2\/pages"}],"about":[{"href":"https:\/\/scicf-wordpress.web-srv01.dsi.universite-paris-saclay.fr\/index.php?rest_route=\/wp\/v2\/types\/page"}],"author":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/scicf-wordpress.web-srv01.dsi.universite-paris-saclay.fr\/index.php?rest_route=\/wp\/v2\/users\/1"}],"replies":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/scicf-wordpress.web-srv01.dsi.universite-paris-saclay.fr\/index.php?rest_route=%2Fwp%2Fv2%2Fcomments&post=15"}],"version-history":[{"count":10,"href":"https:\/\/scicf-wordpress.web-srv01.dsi.universite-paris-saclay.fr\/index.php?rest_route=\/wp\/v2\/pages\/15\/revisions"}],"predecessor-version":[{"id":637,"href":"https:\/\/scicf-wordpress.web-srv01.dsi.universite-paris-saclay.fr\/index.php?rest_route=\/wp\/v2\/pages\/15\/revisions\/637"}],"wp:attachment":[{"href":"https:\/\/scicf-wordpress.web-srv01.dsi.universite-paris-saclay.fr\/index.php?rest_route=%2Fwp%2Fv2%2Fmedia&parent=15"}],"curies":[{"name":"wp","href":"https:\/\/api.w.org\/{rel}","templated":true}]}}<\/pre>\n
Culture cellulaire<\/h4>\n